РЕЗЮМЕ. Фенхель вважається дуже важливою пряною рослиною з потужним терапевтичним потенціалом. У деяких випадках спостерігали покращення якостей цієї цінної рослини під дією обраного фізичного мутагену (гамма-випромінювання) на насіння у формі п’яти обраних доз viz., 50, 100, 150, 200 та 250 Гр для порушення генетичної консистенції вузької генетичної бази рослин фенхелю, також відмічали позитивне явище синцитів, при цьому повний хроматин переходив до материнських клітин пилку оброблюваної рослини, що сприяло утворенню диморфних зерен пилку. Такі зерна пилку з різним генетичним вмістом відіграють значну роль у виникненні внутрішньовидової поліплоїдизації. Цікавий біологічний процес, який часто спостерігають під час мікроспорогенезу вищих рослин, – розвиток синцитів, цитоміксис між клітинами рослин та утворення великих зерен пилку, – має еволюційне значення. Під час цього експерименту було зареєстровано цитоміктичну поведінку Foeniculum vulgare Mill.
Ключові слова: цитоміксис, Foeniculum vulgare Mill., гамма-випромінювання, родючість пилку, синцити
Повний текст та додаткові матеріали
Цитована література
Barton, L.J., Wilmington, S.R., Martin, M.J., Skopec, H.M., Lovander, K.E., Pinto, B.S., and Geyer, P.K., Unique and shared functions of nuclear lamina LEM domain proteins in Drosophila, Genetics, 2014, vol. 197, pp. 653–665.
Bellucci, M., Roscini, C., and Mariani, A., Cytomixis in pollen mother cells of Medicago sativa L, J. Hered., 2003, vol. 94, pp. 512–516.
Bhat, T.A., Parveen, S., and Khan, A.H., MMS-induced cytomixis in pollen mother cells of broad bean (Vicia faba L.), Turk. J. Bot., 2006, vol. 3, pp. 273–279.
Dwivedi, H. and Kumar, G., Induced syncyte formation via cytomixis in Trachyspermum ammi (L.) Sprague (Apiaceae), Caryologia, 2018, vol. 71, pp. 420–427.
Falistocco, E., Tosti, N., and Falcinelli, M., Cytomixis in pollen mother cells of diploid Dactylis, one of the origins of 2n gametes, J. Hered., 1995, vol. 86, pp. 448–453.
Ghaffari, S.M., Occurrence of diploid and polyploid microspores in Sorghum bicolor (Poaceae) is the result of cytomixis, Afr. J. Biotechnol., 2006, vol. 5, pp. 1450–1453.
Guan, J.Z., Wang, J.J., Cheng, Z.H., Liu, Y., and Li, Z.Y., Cytomixis and meiotic abnormalities during microsporogenesis are responsible for male sterility and chromosome variations in Houttuynia cordata, Genet. Mol. Res., 2012, vol. 11, pp. 121–30.
Kaul, M.L., Male sterile gene action diversity in barley and pea, Nucleus, 1991, vol. 34, pp. 32–39.
Kaur, G.J. and Arora, D.S., Antibacterial and phytochemical screening of Anethum graveolens, Foeniculum vulgare and Trachyspermum ammi, BMC complementary and alternative medicine, BMC Complementary Altern. Med., 2009, vol. 9, p. 30.
Kim, J.S., Oginuma, K., and Tobe, H., Syncyte formation in the microsporangium of Chrysanthemum (Asteraceae): a pathway to infraspecific polyploidy, J. Plant Res., 2009, vol. 122, pp. 439–444.
Kornicke, M., Uber ortsveranderung von Zellkarnern SB, Niederrheinische Gesellschaft Natur- Heilkunde, 1901, vols. 14–25.
Kravchenko, L.N., Osobennosti meioza u pshenitsy i ee gibridov (Features of Meiosis in Wheat and Its Hybrids), Chisinau: Shtiintsa, 1997.
Kravets, E.A., Nature, significance, and cytological consequences of cytomixis, Cytol. Genet., 2012, vol. 46, pp. 188–195.
Kumar, G., Induced cytomixis in chickpea (Cicer arietinum L.), Nucleus, 2002, vol. 45, pp. 24–26.
Kumar, G. and Singh, S., Induced cytomictic crosstalk behaviour among micro-meiocytes of Cyamopsis tetragonoloba (L.) Taub. (cluster bean): Reasons and repercussions, Caryologia, 2020, vol. 73, no. 2, pp. 111–119.
Kumar, P., Singhal, V.K., and Kaur, D., Impaired male meiosis due to irregular synapsis coupled with cytomixis in a new diploid cytotype of Dianthus angulatus (Caryophyllaceae) from Indian cold deserts, Folia Geobot., 2012, vol. 47, pp. 59–68.
Li, X.F., Song, Z.Q., Feng, D.S., and Wang, H.G., Cytomixis in Thinopyrum intermedium, Thinopyrum ponticum and its hybrids with wheat, Cereal Res. Commun., 2009, vol. 37, pp. 353–361.
Liu, H., Guo, G., He, Y., and Zheng, G., Nuclear migration: Endless efforts toward unraveling its molecular apparatus, Chin. Sci. Bull., 2003, vol. 48, pp. 615–619.
Malallah, G.A. and Attia, T.A., Cytomixis and its possible evolutionary role in a Kuwaiti population of Diplotaxis harra (Brassicaceae), Bot. J. Linn., 2003, vol. 143, pp. 169–175.
Mendes-Bonato, A.B., Pagliarini, M.S., Silva, N., and Valle, C.B., Meiotic instability in invader plants of signal grass Brachiaria decumbens Stapf. (Gramineae), Genet. Mol. Biol., 2001, vol. 23, pp. 619–625.
Mursalimov, S.R. and Deineko, E.V., How cytomixis can form unreduced gametes in tobacco, Plant Syst. Evol., 2015, vol. 301, pp. 1293–1297.
Mursalimov, S.R., Sidorchuk, Y.V., Zagorskaya, A.A., and Deineko, E.V., Migration of DNA-containing organelles between tobacco microsporocytes during cytomixis, Russ. J. Dev. Biol., vol. 49, pp. 159–165.
Negrón-Ortiz, V., Chromosome numbers, nuclear DNA content, and polyploidy in Consolea (Cactaceae), an endemic cactus of the Caribbean Islands, Am. J. Bot., 2007, vol. 94, pp. 1360–1370.
Oktay, M., Gülçin, İ., and Küfrevioğlu, Ö.İ., Determination of in vitro antioxidant activity of fennel (Foeniculum vulgare) seed extracts, LWT–Food Sci. Technol., 2003, vol. 36, pp. 263–271.
Özbek, H., Uğraş, S., Dülger, H., Bayram, I., Tuncer, I., Öztürk, G., and Öztürk, A., Hepatoprotective effect of Foeniculum vulgare essential oil, Fitoterapia, 2003, vol. 74, pp. 317–319.
Pecrix, Y., Rallo, G., Folzer, H., Cigna, M., Gudin, S., and Le Bris, M., Polyploidization mechanisms: temperature environment can induce diploid gamete formation in Rosa sp., J. Exp. Bot., 2011, vol. 62, pp. 3587–3597.
Rana, P.K., Kumar, P., and Singhal, V.K., Spindle irregularities, chromatin transfer, and chromatin stickiness during male meiosis in Anemone tetrasepala (Ranunculaceae), Turk. J. Bot., 2013, vol. 37, pp. 67–176.
Sidorchuk, Y.V., Deineko, E.V., and Shumny, V.K., Peculiarities of cytomixis in pollen mother cells of transgenic tobacco plants (Nicotiana tabacum L.) with mutant phenotype, Cell Tissue Biol., 2007, vol. 1, pp. 570–576.
Singhal, V.K. and Kumar, P., Impact of cytomixis on meiosis, pollen viability and pollen size in wild populations of Himalayan poppy (Meconopsis aculeata Royle), J. Biosci., vol. 33, pp. 371–380.
Singhal, V., Rana, P., Kumar, P., and Kaur, D., Persistent occurrence of meiotic abnormalities in a new hexaploid cytotype of Thalictrum foetidum from Indian cold deserts, Biologia, 2011, vol. 66, pp. 458–464.