ISSN 0564-3783  



Головна
Контакти
Архів  
Тематика журналу
Підписка
До уваги авторів
Редколегія
Мобільна версія


In English

Export citations
UNIMARC
BibTeX
RIS





Молекулярна організація 5S рибосомної ДНК і таксономічний статус avenella flexuosa (L.) Drejer (Poaceae)

Іщенко О.О., Мельник В.М., Парнікоза І.Ю., Буджак В.В., Панчук І.І., Кунах В.А., Волков Р.А.

Оригінальна работа 




Авінелла звивиста, Avenella flexuosa (L.) Drejer (також відома як щучник звивистий (Deschampsia flexuosa (L.) Trin.), або лерхенфельдія звивиста (Lerchenfeldia flexuosa (L.) Schur)) – вид багаторічних трав’янистих рослин родини Злакові (Poaceae), який широко розповсюджений на території Євразії, Африки, Північної та Південної Америки. Приналежність цього виду до роду Deschampsia протягом довгого часу залишається відкритим питанням. Враховуючи, що порівняння 5S рДНК є зручним інструментом у молекулярній таксономії рослин, ми клонували та сиквенували цю ділянку геному A. flexuosa і визначили генетичні дистанції між цим видом та іншими видами триби Poeae. Встановлено, що в геномі A. flexuosa присутні щонайменше два структурні класи повторів 5S рДНК. Спейсерні ділянки у складі 5S рДНК A. flexuosa та D. antarctica мають низький рівень подібності, який не перевищує рівень подібності з представниками кількох інших родів триби Poeae. Клони 5S рДНК A. flexuosa та D. antarctica утворюють дві окремі клади на філодендрограмі. На загал отримані результати свідчать на користь виділення A. flexuosa в окремий рід Avenella.

РЕЗЮМЕ. Овсик извилистый, Avenella flexuosa (L.) Drejer (также известный как луговик извилистый (Deschampsia flexuosa (L.) Trin.), или лерхенфельдия извилистая (Lerchenfeldia flexuosa (L.) Schur)) – вид многолетних травянистых растений семейства Poaceae, который широко распространен на территории Евразии, Африки, Северной и Южной Америки. Принадлежность этого вида к роду Deschampsia в течение долгого времени остается открытым вопросом. Учитывая, что сравнение 5S рДНК является удобным инструментом в молекулярной таксономии растений, мы клонировали и сиквенировали этот участок генома A. flexuosa и определили генетические дистанции между этим видом и другими видами трибы Poeae. Установлено, что в геноме A. flexuosa присутствуют не менее двух структурных классов повторов 5S рДНК. Спейсерные участки в составе 5S рДНК A. flexuosa и D. antarctica имеют низкий уровень сходства, который не превышает уровень сходства с представителями нескольких других родов трибы Poeae. Клоны 5S рДНК A. flexuosa и D. antarctica образуют две отдельные клады на филодендрограмме. В целом полученные результаты свидетельствуют в пользу выделения A. flexuosa в отдельный род Avenella.

Ключові слова: молекулярна еволюція і систематика, міжгенний спейсер 5S рДНК, Avenella, Deschampsia, Poeae
молекулярная эволюция и систематика, межгенный спейсер 5S рДНК, Avenella, Deschampsia, Poeae

Цитологія і генетика 2020, том 54, № 6, C. 3-13

  • Чернівецький національний університет імені Юрія Федьковича МОН України, вул. Коцюбинського, 2, Чернівці, 58012, Україна
  • Інститут молекулярної біології і генетики НАН України, вул. Академіка Заболотного, 150, Київ, 03143, Україна
  • ДУ Національний антарктичний науковий центр МОН України, бульвар Тараса Шевченка, 16, Київ, 01601, Україна

E-mail: r.volkov chnu.edu.ua

Іщенко О.О., Мельник В.М., Парнікоза І.Ю., Буджак В.В., Панчук І.І., Кунах В.А., Волков Р.А. Молекулярна організація 5S рибосомної ДНК і таксономічний статус avenella flexuosa (L.) Drejer (Poaceae), Цитологія і генетика., 2020, том 54, № 6, C. 3-13.

В "Cytology and Genetics". Якщо тільки можливо, цитуйте статтю по нашій англомовній версії:
O. O. Ishchenko, V. M. Mel’nyk, І. Y. Parnikoza, V. V. Budzhak, І. І. Panchuk, V. A. Kunakh & R. A. Volkov Molecular Organization of 5S Ribosomal DNA and Taxonomic Status of Avenella flexuosa (L.) Drejer (Poaceae), Cytol Genet., 2020, vol. 54, no. 6, pp. 505–513
DOI: 10.3103/S0095452720060055


Посилання

1. Linnaeus, C., Species Plantarum, Holmiae: Impensis Laurentii Salvii, 1753. https://doi.org/10.5962/bhl.title.669

2. Palisot de Beauvois, A.M.F.J., Essai d’une nouvelle Agrostographie; ou nouveau genres des Graminées; avec figures représentant les caracters de tous les genres, Paris: Chez l’auteur, Rue de Turenne, 1812.

3. Mosyakin, S.L. and Fedoronchuk, M.M., Vascular Plants of Ukraine. A Nomenclatural Checklist, Kiev: M.G. Kholodny Institute of Botany, 1999. https://doi.org/10.13140/2.1.2985.0409

4. Chiapella, J., A molecular phylogenetic study of De-schampsia (Poaceae: Aveneae) inferred from nuclear ITS and plastid trnL sequence data: support for the recognition of Avenella and Vahlodea, Taxon, 2007, vol. 56, no. 1, p. 55–64. https://doi.org/10.2307/25065735

5. Albers, F., Cytotaxonomie und B-Chromosomen bei Deschampsia cespitosa (L.) P.B. und verwandten Arten, Beitr. Biol. Pflanzen, 1972, vol. 48, pp. 1–62.

6. Albers, F., Cytosystematische Untersuchungen in der Subtribus Deschampsiineae Holub (Tribus Aveneae Nees). II. Die Gattungen Vahlodea Fr. und Avenella Koch, Ber. Deutsch. Bot. Ges., 1972, vol. 85, pp. 279–285.

7. Albers, F. Vergleichende Karyologie der Gräser-Subtriben Aristaveninae und Airinae (Poaceae-Aveneae), Plant Syst. Evol., 1980, vol. 136, pp. 137–167.

8. Quintanar, A., Castroviejo, S., and Catalán, P. Phylogeny of the tribe Aveneae (Pooideae, Poaceae) inferred from plastid trnT-F and nuclear ITS sequences, Am. J. Bot., 2007, vol. 94, no. 9, pp. 1554–1569. https://doi.org/10.3732/ajb.94.9.1554

9. Chiapella, J. and Zuloaga, F.O., A revision of Deschampsia, Avenella, and Vahlodea (Poaceae, Poeae, Airinae) in South America, Ann. Missouri Bot. Garden, 2010, vol. 97, no. 2, pp. 141–162.https://doi.org/10.3417/2008115

10. Volkov, R.A., Panchuk, I.I., Borisjuk, L.G., and Borisjuk M.V. Plant rDNA: organization, evolution, and using, Cytol. Genet., 2003, vol. 37, no. 1, pp. 68–72.

11. Davis, J.I. and Soreng, R.J., A preliminary phylogenetic analysis of the grass subfamily Pooideae (Poaceae), with attention to structural features of the plastid and nuclear genomes, including an intron loss in GBSSI, Aliso, 2007, vol. 23, pp. 335–348.

12. Soreng, R.J., Davis, J.I., and Voionmaa, M. A. A phylogenetic analysis of Poaceae tribe Poeae sensu lato based on morphological characters and sequence data from three plastid-encoded genes: evidence for reticulation, and a new classification for the tribe, Kew Bull., 2007, vol. 62, no. 3, pp. 425–454.

13. Soreng, R.J., Peterson, P.M., Romschenko, K., Davidse, G., Zuloaga, F.O., Judziewicz, E.J., Filgueiras, T.S., Davis, J.I., and Morrone, O.A., A worldwide phylogenetic classification of the Poaceae (Gramineae), J. Syst. Evol., 2015, vol. 53, no. 2, pp. 117–137. https://doi.org/10.1111/jse.12150

14. Tkach, N., Schneider, J., Döring, E., Wölk, A., Hochbach, A., Nissen, J., Winterfeld, G., Meyer, S., Gabriel, J., Hoffmann M.H., and Röser, M. Phylogeny, morphology and the role of hybridization as driving force of evolution in grass tribes Aveneae and Poeae (Poaceae), bioRvix, 2019, 707588. https://doi.org/10.1101/707588

15. Döring, E., Schneider, J., Hilu, K., and Röser, M., Phylogenetic relationships in the Aveneae/Poeae complex (Pooideae, Poaceae), Kew Bull., 2007, vol. 62, no 3, pp. 407–424.

16. Saarela, J.M., Liu, Q., Peterson, P.M., Soreng, R.J., and Paszko, B., Phylogenetics of the grass ‘Aveneae-type plastid DNA clade’ (Poaceae: Pooideae, Poeae) based on plastid and nuclear ribosomal DNA sequence data, in Diversity, Phylogeny, and Evolution in the Monocotyledons, Aarhus: Aarhus University Press, 2010.

17. Garcia-Suarez, R., Alonso-Blanco, C., Fernandez-Carvajal, M.C., Fernandez-Prieto, J.A., Roca, A., and Giraldez, R., Diversity and systematics of Deschampsia sensu lato (Poaceae), inferred from karyotypes, protein electrophoresis, total genomic DNA hybridization and chloroplast DNA analysis, Plant Syst. Evol., 1997, vol. 205, pp. 99–110. https://doi.org/10.1007/BF00982800

18. Souto, D.P.F., Catalano, S.A., Tosto, D., Bernasconi, P., Sala, A., Wagner, M., and Corach, D., Phylogenetic relationships of Deschampsia antarctica (Poaceae): insights from nuclear ribosomal ITS, Plant Syst. Evol., 2006, vol. 261, pp. 1–9. https://doi.org/10.1007/s00606-006-0425-x

19. Andreev, I.O., Spiridonova, E.V., Kyryachenko, S.S., Parnikoza, I.Yu., Maidanyuk D.N., Volkov, R.A., Kozeretska, I.A., and Kunakh, V.A., Population-genetic analysis of Deschampsia antarctica from two regions of Maritime Antarctica, Moscow Univ. Biol. Sci. Bull., 2010, vol. 65, no. 4, pp. 208–210. https://doi.org/10.3103/S0096392510040243

20. Volkov, R.A., Kozeretska, I.A., Kyryachenko, S.S., Andreev, I.O., Maidanyuk, D.N., Parnikoza, I.Yu., and Kunakh, V.A., Molecular evolution and variability of ITS1 and ITS2 in populations of Deschampsia antarctica from two regions of the Maritime Antarctic, Polar Sci., 2010, vol. 4, no. 3, pp.469–478. https://doi.org/10.1016/j.polar.2010.04.011

21. Amosova, A.V., Bolsheva, N.L., Zoshchuk, S.A., Twardovska, M.O., Yurkevich, O.Yu., Andreev, I.O., Samatadze, T.E., Badaeva, E.D., Kunakh, V.A., and Muravenko, O.V., Comparative molecular cytogenetic characterization of seven Deschampsia (Poaceae) species, PLoS One, 2017, vol. 12, no. 4, e0138878. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0175760

22. Volkov, R.A., Zanke, C., Panchuk, I.I., and Hemleben, V. Molecular evolution of 5S rDNA of Solanum species (sect. Petota): application for molecular phylogeny and breeding, Theor. Appl. Genet., 2001, vol. 103, no. 8, pp. 1273–1282. https://doi.org/10.1007/s001220100670

23. Saini, A. and Jawali, N., Molecular evolution of 5S rDNA region in Vigna subgenus Ceratotropis and its phylogenetic implications, Plant Syst. Evol., 2009, vol. 280, nos. 3–4, p. 187–206. https://doi.org/10.1007/s00606-009-0178-4

24. Garcia, S., Panero, J.L., Siroky, J., and Kovarik, A. Repeated reunions and splits feature the highly dynamic evolution of 5S and 35S ribosomal RNA genes (rDNA) in the Asteraceae family, BMC Plant Biol., 2010, vol. 10, no. 1, pp. 176–195. https://doi.org/10.1186/1471-2229-10-176

25. Garcia, S., Garnatje, T., and Kovarik, A., Plant rDNA database: ribosomal DNA loci information goes online, Chromosoma, 2012, vol. 121, no. 4, pp. 389–394. https://doi.org/10.1007/s00412-012-0368-7

26. Rusak, O.O., Petrashchuk, V.I., Panchuk, I.I., and Volkov, R.A., Molecular organization of 5S rDNA in two Ukrainian populations of Sycamore (Acer pseudoplatanus), Bull. Vavilov Soc. Genet. Breed. Ukr., 2016, vol. 14, no. 2, pp. 216–220.

27. Volkov, R.A., Panchuk, I.I., Borisjuk, N.V., Hosiawa-Baranska, M., Maluszynska, J., and Hemleben, V. Evolutional dynamics of 45S and 5S ribosomal DNA in ancient allohexaploid Atropa belladonna, BMC Plant Biol., 2017, vol. 17, no. 1, pp. 1–15. https://doi.org/10.1186/s12870-017-0978-6

28. Baum, B.R. and Johnson, D.A., Lophopyrum Á. Löve (1980), Thinopyrum Á. Löve (1980), Trichopyrum Á. Löve (1986): one, two or three genera? A study based on the nuclear 5S DNA, Genet. Resour. Crop. Evol., 2018, vol. 65, pp. 161–186. https://doi.org/10.1007/s10722-017-0519-z

29. Vaio, M., Mazzella, C., Guerra, M., and Speranza, P., Effects of the diploidisation process upon the 5S and 35S rDNA sequences in the allopolyploid species of the Dilatata group of Paspalum (Poaceae, Paniceae), Aust. J. Bot., 2019, vol. 67, no. 7, pp 521–530. https://doi.org/10.1071/BT18236

30. Cloix, C., Tutois, S., Mathieu, O., Cuvillier, C., Espagno, M.C., Picard, C., and Tourmente, S., Analysis of 5S rDNA arrays in Arabidopsis thaliana: physical mapping and chromosome-specific polymorphisms, Genome Res., 2000, vol. 10, no 5, pp. 679–690. https://doi.org/10.1101/gr.10.5.679

31. Simeone, M.C., Cardoni, S., Piredda, R., Imperatori, F., Avishai, M., Grimm, G.W., and Denk, T., Comparative systematics and phylogeography of Quercus section Cerris in western Eurasia: inferences from plastid and nuclear DNA variation, PeerJ., 2018, vol. 6, e5793. https://doi.org/10.7717/peerj.5793

32. Kolano, B.M., Cann, J., Oskędra, M., Chrapek, M., Rojek, M., Nobis, A., and Weiss-Schneeweiss, H., Parental origin and genome evolution of several Eurasian hexaploid species of Chenopodium (Chenopodiaceae), Phytotaxa, 2019, vol. 392, no. 3, pp. 163–185. https://doi.org/10.11646/phytotaxa.392.3.1

33. Tynkevich, Y.O. and Volkov, R.A., 5S Ribosomal DNA of distantly related Quercus species: molecular organization and taxonomic application, Cytol. Genet., 2019, vol. 53, no. 6, pp. 459–466. https://doi.org/10.3103/S0095452719060100

34. Ishchenko, O.O., Panchuk, I.I., Andreev, I.O., Kunakh, V.A., and Volkov, R.A., Molecular organization of 5S ribosomal DNA of Deschampsia antarctica, Cytol. Genet., 2018, vol. 52, no. 6, pp. 416–421. https://doi.org/10.3103/S0095452719010146

35. Röser, M., Winterfeld, G., Grebenstein, B., and Hemleben, V., Molecular diversity and physical mapping of 5S rDNA in wild and cultivated oat grasses (Poaceae: Aveneae), Mol. Phylogen. Evol., 2001, vol. 21, no. 2, pp. 198–217. https://doi.org/10.1006/mpev.2001.1003

36. Peng, Y.Y., Wei, Y.M., Baum, B.R., and Zheng, Y.L., Molecular diversity of the 5S rRNA gene and genomic relationships in the genus Avena (Poaceae: Aveneae), Genome, 2008, vol. 51, no. 2, pp. 137–154. https://doi.org/10.1139/G07-111

37. Baum, B.R., Edwards, T., Mamuti, M., and Johnson, D.A., Phylogenetic relationships among the polyploid and diploid Aegilops species inferred from the nuclear 5S rDNA sequences (Poaceae: Triticeae), Genome, 2012, vol. 55, no. 3, pp. 177–193. https://doi.org/10.1139/g2012-006

38. Volkov, A.R. and Panchuk, I.I., 5S rDNA of Dactylis glomerata (Poaceae): molecular organization and taxonomic application, Bull. Vavilov Soc. Genet. Breed. Ukr., 2014, vol. 12, no. 1, pp. 3–11.

39. Nani, T.F., Cenzi, G., Pereira, D.L., Davide, L.C., and Techio, V.H., Ribosomal DNA in diploid and polyploid Setaria (Poaceae) species: number and distribution, Comp. Cytogenet., 2015, vol., 9, no. 4, pp 645–660. https://doi.org/10.3897/CompCytogen.v9i4.5456

40. Porebski, S., Bailey, L.G., and Baum, B.R., Modification of a CTAB DNA extraction protocol for plants containing high polysaccharide and polyphenol components, Plant Mol. Biol. Rep., 1997, vol. 15, no. 1, pp. 8–15. https://doi.org/10.1007/BF02772108

41. Sambrook, J., Fritsch, E., and Maniatis, T. Molecular Cloning, New York: Cold Spring Harbor Laboratory, 1989.

42. Thompson, J.D., Higgins, D.G., and Gibson, T.J., CLUSTAL W: improving the sensitivity of progressive multiple sequence alignment through sequence weighting, position-specific gap penalties and weight matrix choice, Nucleic Acids Res., 1994, vol. 22, no. 22, pp. 4673–4680. https://doi.org/10.1093/nar/22.22.4673

43. Stamatakis, A., RAxML Version 8: a tool for phylogenetic analysis and post-analysis of large phylogenies, Bioinformatics, 2014, vol. 30, no. 9, pp. 1312–1313. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btu033

44. Simon, L., Rabanal, F.A., Dubos, T., Oliver, C., Lau-ber, D., Poulet, A., Vogt, A., Mandlbauer, A., Le Goff S., Sommer A., Duborjal H., Tatout C., and Probst, A.V., Genetic and epigenetic variation in 5S ribosomal RNA genes reveals genome dynamics in Arabidopsis thaliana, Nucleic Acids Res., 2018, vol. 46, no. 6, pp. 3019–3033. https://doi.org/10.1093/nar/gky163

45. Tynkevich, Y.O. and Volkov, R.A., Structural organization of 5S ribosomal DNA in Rosa rugosa, Cytol. Genet., 2014, vol. 48, no. 1, pp. 1–6. https://doi.org/10.3103/S0095452714010095

46. Ishchenko, O.O. and Panchuk, I.I., Molecular organization of 5S rDNA of perennial ryegrass Lolium perenne L., Bull. Vavilov Soc. Genet. Breed. Ukr., 2018, vol. 16, no. 2, pp. 166–173. https://doi.org/10.7124/visnyk.utgis.16.2.1054

47. Ishchenko, O.O., Derevenko, T.O., and Panchuk, I.I. 5S rDNA of Timothy-grass Phleum pratense L., Sci. Herald Chernivtsy Univ., Biol. (Biol. Syst.), 2018, vol. 10, no. 2, pp. 107–112. https://doi.org/10.31861/biosystems2018.02.107

Copyright© ICBGE 2002-2021 Coded & Designed by Volodymyr Duplij Modified 24.09.21